實驗方法原理 將細胞樣品稀釋在電解質（生理鹽水或D-PBSA ) 中，然后移入帶孔管子的下部，讓0.5ml的樣品溶液流過計數器以計算其中的細胞數。
實驗步驟
材料
無菌：細胞培養物、D-PBSA、0. 2 5 % 粗制胰蛋白酶、生長培養基
非無菌：計數杯
操作步驟
1. 用胰酶消化單層培養的細胞，或從懸浮培養中收集樣品。充分地混勻細胞懸液使之盡量分散成單個細胞。
2. 在一個 25m l 的燒杯或任一樣品杯中，用計數液體以 1 : 50 稀釋細胞懸液至 20m l。使用自動分散器（圖 5. 2 0 ) 會加速稀釋，會使重復性更好。
注意事項 快速地分配計數溶液會產生氣泡，當這些氣泡通過小孔時會被當作細胞統計在內。因而計數溶液在開始計數前應靜置一會兒。如果溶液被先分配，然后再加入細胞，則出現氣泡的可能性就會很小。
3 . 充分地混勻細胞懸液，然后移入帶孔管子的底部，確保能覆蓋住小孔，樣品杯中的外部電極應位于計數溶液的液面之下。
4 . 檢査程序設置：
(a) 臨界值設定（細胞大小的下限通常為 7. 0um );
(b ) 檢測體積（通常 0.5 ml)；
(c) 背景去除（視需要而定）；
(d ) 溶解設定（例如，若 20 ml 的 D-PBSA 中有 0.4 ml 被計數，則設為 50)。
5. 檢査可見的模擬顯示
(a) 確保所有的細胞都在設定的臨界范圍之內；
(b ) 檢査細胞活力或細胞碎片（通過曲線的肩部或正常臨界值下限以下的直方圖來指示）。
(c) 檢査細胞是否聚集成團（即出現在正常大小范圍之上的顆粒)。
6 . 啟動計數程序。
7 . 當計數周期完成時，細胞大小的分布情況將出現在模擬顯示屏上（圖 21.4)。 轉換到數字顯示屏后就可以得到每毫升的細胞數。