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    發布時間:2019-04-05 21:38 原文鏈接: 多孔培養板中單層培養細胞生長曲線的繪制實驗

    實驗方法原理以三種不同的細胞濃度在多孔板中培養三組細胞,在達到平臺期之前,每天計數一個板中的細胞。
    實驗步驟

    材料

    無菌

    單層細胞培養:A549、Vero 或 HeLa-S3, 75 cm2 培養瓶,晚對數期 1 瓶

    0.25% 粗制胰蛋白酶混合有 10 mmol/L EDTA 5 ml

    生長液,100 ml, 伴有 26 mmol/L NaHCO3 300 ml

    D-PBSA(預洗并用于細胞計數)50 ml

    12 孔培養板 10 塊

    非無菌:

    用于裝培養板的塑料盒
    CO2 溫箱或 5% CO2 以充盈塑料盒

    操作步驟

    1. 對于一般的傳代,先用胰蛋白酶消化細胞(見方案 13.2)。


    2. 稀釋細胞懸液分別至 1X105 個/ml,3X104 個/ml 和 1X104 個/m l,每種濃度均含 25 ml 培養基。


    3. 用 3 塊 12 孔板,每孔一種細胞濃度,每孔 2 ml 細胞懸液。最上面四孔加 1X104 個/ml,第二排加 3X104 個/ml,第三排加 1X105 個/ml (圖 21. 7)。從孔的中央處慢慢地將細胞懸液加入,這樣不會使液體在孔內產生旋渦。同樣地不要搖動培養板以期混合細胞,因為培養基的圓周運動會使細胞集中在孔的中央。


    4. 將培養板賈于濕潤的 CO2 濕箱內,或者用 5%C02 充盈塑料盒,然后封閉。


    5. 24 h 后,將培養板從溫箱中取出第一塊板,計數每種濃度的 3 個孔中的細胞數:


    (a) 將含有要計數細胞的 3 個孔中的培養液完全吸掉;
    (b ) 加入 0.5 ml 胰蛋內酶/EDTA 至上述 3 個孔中;
    (c) 溫育培養板 15 min;
    (d ) 加人 0.5 ml 含血清的培養基,在胰蛋白酶/EDTA/培養基中將細胞分離開來,取 0.4 ml 細胞懸液至 19.6 ml 的 D-PBSA 中;
    (e) 用電子細胞計數器計數細胞。


    6. 染剩余不同密度孔中的細胞(見 16. 4.2 節)。

    提示 也可以用血球計數板進行細胞計數,但這對于細胞濃度較低者比較困難。如果要用血球計教板,可將胰蛋白酶的容積減少至 0.1 ml,小心地用微吸管將細胞分散,使之不產生氣泡,然后將細胞移至血球計數板。

    7. 如第 5 、6 步,在 48 和 72 h 時重復取樣。


    8. 于 72 h 時或者更早一些時間換培養液,這可依據 pH 的下降來決定(見方案 13.1,彩圖 22b )。


    9. 對于迅速生長的細胞(即 PDT 為 12~24 h 的細胞)可以每天連續取樣,但是對于生長緩慢的細胞(也就是 PDT > 24 h ),則每兩天取樣,直至細胞達到平臺期。

    10. 依據 pH 的改變,每 1、2 或 3 天換培養基。
     




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