膠體過濾法
| 實驗材料 | Sephacryl S-300膠體 |
|---|---|
| 試劑、試劑盒 | 緩沖液buffer A-150 |
| 儀器、耗材 | 色析管柱 鐵夾 試管 鐵架 水平儀 收集器 濃縮用離心機 濃縮用離心管 |
| 實驗步驟 |
一、儀器設備 二、藥品試劑 三、管柱裝填 1.
以純水沖洗玻璃管柱
(以純水上下沖洗即可,嚴禁使用試管刷);并請了解管柱的構造與拆裝方法,垂直架好管柱,以軟管連接部分收集器,并以bufferA-150
試看管路是否通暢;可以用止血鉗或長尾文書夾夾住出口軟管,則可控制溶離的進行。 注意系統的擺設要適當,不要裝置于交通要沖。 2. 依預估量取出Sephacryl 膠體,注意膠體的溫度與緩沖液是否已平衡;將瓶中的膠體上下震蕩,使的完全懸浮,但勿產生太多氣泡。 3. 在管柱內加入約10 cm 高緩沖液,然后將膠體慢慢沿著管壁倒入管柱,一直加到管柱頂端,開始流洗后膠體沈降很快。當膠體上方的液面逐漸降低時,可于頂端添加膠體,以達所要高度;膠體高度約90 cm。 4. 膠體完全沈降后,小心以buffer A-150 加滿管柱,關閉出口,裝上頂端端蓋并連通緩沖液瓶,打開出口以重力流洗。 調整緩沖液瓶高度,使流速約每五~六秒一滴,并設定收集體積為2.5 mL/tube。 5. 膠柱流洗約100 mL 后,關閉出口,拆開頂端端蓋,先以滴管吸出膠體上方的溶液到剩約1 cm 高,注意勿破壞膠體表面平整; 然后打開出口,使液面下降至膠體面,再關閉出口,準備注入樣本。 四、樣本色析進行 1. 以微量移液器或滴管吸取樣本 (樣本體積不得超過膠體總體積的3%),沿著膠體上方管壁緩慢加入,注意切勿破壞膠體的平整表面!(樣本確實體積 _______ mL) 2. 打開出口,同時開啟部分收集器;當樣本完全沒入膠體時,關閉出口,緩緩加入與樣本相等體積的buffer A-150,打開出口待其慢慢進入膠體中,如此重復二次。不得擾動膠體表面,造成凹陷。 3. 暫時關閉出口,將液面高度加滿至管柱頂端,并把頂端端蓋鎖上;然后打開出口開始溶離,調整緩沖液瓶的高度,使流速為6 s 一滴。 4. 要留心觀察前面幾個分劃,確定整個系統運轉無礙,小心部分收集器最容易出問題。管柱預計將流洗過夜,收集約80 管。 10) 收集試管,進行蛋白質定量分析以及GUS 活性測定,并請作圖。 5. 收集GUS 活性區,以Centriprep-30 濃縮至10 mL 后,加buffer A-0 稀釋至20 mL,再次濃縮至 _______ mL (GF),保留100 uL。 6. 管柱請再以buffer A-150 流洗100 mL 后,小心放置一旁,準備以后進行分子量測定。 五、分子量測定 1. 進行分子量測定前一天,請先以buffer A-150 流洗100 mL,并檢查膠柱內有無氣泡產生,若有嚴重的氣泡或干裂,必須重新裝填管柱。 2. 取標準分子量溶液0.4 mL,加上純質目標酶0.5 mL (以親和層析法所得的AF 部份),如上法注入管柱中,立刻開始進行膠體過濾,并收集各分劃。請依循上述所有管柱及分劃收集器的操作要點。 3. 收集所得,進行蛋白質定量分析,可定出數個蛋白質尖峰,以作為分子量依據;另以目測法,決定紅色高峰的管數,則可定出vitamin B12的溶離管數。利用以上數據,可畫出分子量與溶離管數間的直線關系,作為分子量判定的標準校正線。 4. 同樣的一批分劃,請進行酶活性分析 (GUS),則可定出酶的溶離體積,對照上述標準校正線,則可求出酶的分子量。 六、拆除管柱及保存膠體 1. 若管柱長期不用,應當自管柱中取出膠體,以緩沖液清洗后,置冷藏室中保存,但絕對不要放在冷凍箱中。膠體若裝填太緊,有時可能不易取出,要有耐心地以緩沖液慢慢沖出來。 2. 膠體可以加0.01% NaN3防止霉菌生長,但使用前記得要洗去;再度使用時,請檢查膠體中有無灰黑色霉菌顆粒,若有結塊而不易打散者,也不要使用。
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