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    發布時間:2019-03-27 22:34 原文鏈接: 質粒轉染大腸桿菌

    質粒轉染大腸桿菌可應用于:(1)細菌株的構建;(2)細胞工程;

    實驗方法原理感受態細胞易于接受外來基因成為重組細胞,實驗將質粒加入有感受態細胞的培養皿中,熱擊處理進行質粒轉染。
    實驗材料

    細胞株質粒

    試劑、試劑盒

    鏈霉素青霉素FCSPBS胰酶EDTA轉染試劑(Lipofectamine TM2000)胰化蛋白胨酵母提取物瓊脂NaClNaOH氨芐青霉素卡那霉素質粒提取試劑盒

    儀器、耗材

    高壓滅菌鍋42℃恒溫水浴鍋恒溫搖床無菌培養板消毒1.5ml離心管消毒槍頭無菌操作臺

    實驗步驟

    一、轉染


    1. 從-70℃ 冰箱中取 200μl 感受態細胞懸液,室溫下使其解凍,解凍后立即置冰上。


    2. 加入質粒 DNA 溶液(含量不超過 50ng,體積不超過 10μl),輕輕搖勻,冰上放置 30 分鐘后。


    3.42℃ 水浴中熱擊 45s/90s,熱擊后迅速置于冰上冷卻 3-5 分鐘。


    4. 向管中加入 1 mlLB 液體培養基(不含 Amp),混勻后 37℃ 振蕩培養 1 小時,使細菌恢復正常生長狀態,并表達質粒編碼的抗生素抗性基因(Ampr)。


    5. 將上述菌液搖勻后取 100μl 涂布于含 Amp 的篩選平板上,正面向上放置半小時,待菌液完全被培養基吸收后倒置培養皿,37℃ 培養 16-24 小時。


    6.在轉染的同時應做兩個對照:

    對照組 1:以同體積的無菌雙蒸水代替 DNA 溶液,其它操作與上面相同。此組正常情況下在含抗生素的 LB 平板上應沒有菌落出現。

    對照組 2:以同體積的無菌雙蒸水代替 DNA 溶液,但涂板時只取 5μl 菌液涂布于不含抗生素的 LB 平板上,此組正常情況下應產生大量菌落。


    二、轉染大腸桿菌的擴增


    1. 從 LB 平板上挑取新活化的單個菌落,接種于 3-5 mlLB 液體培養基中,37℃ 下振蕩培養 12 小時左右,直至對數生長后期。將該菌懸液以 1:100-1:50 的比例接種于 100 mlLB 液體培養基中,37℃ 振蕩培養 2-3 小時至 OD600=0.5 左右。


    2. 取上述培養液置于冰中 10 min,之后轉移到已滅菌的 50 ml 離心管中再于冰上放置 5 min


    3. 于 4℃ 離心,2700rmp,10 min,棄上清,收集細菌


    4. 質粒的提取


    準備大腸桿菌質粒提取盒和擴增的帶質粒大腸桿菌培養液


    5. 質粒鑒定(瓊脂糖凝膠電泳)


    三、質粒轉染細胞株的建立


    1. 準備細胞:


    貼壁細胞:轉染前 24 h,在 500 uL 無雙抗完全培養基中接種 0.5~2×105個細胞,轉染時細胞融合度為 80 ~ 90% 。 


    2.對于每個轉染樣品,按下面的方法準備:


    (1)用 50 uL Opti-MEM 稀釋 0.8 ug 質粒 DNA,輕輕吹吸 3 - 5 次混勻,室溫下靜置 5 min。


    (2)輕輕顛倒混勻轉染試劑,用 50 uL Opti-MEM 稀釋 2.0 uL Lipofectamine TM2000,輕輕吹吸 3 - 5 次混勻,室溫下靜置 5 min。


    (3)混合轉染試劑和質粒 DNA 稀釋液,輕輕吹吸 3 - 5 次混勻,室溫下靜置 20 min。注: 轉染復合物一旦形成,應立即加入培養皿中進行細胞轉染。


    (4) 轉染復合物加入到 24 孔細胞板中,100 uL/孔,前后輕搖細胞板混合均勻。


    (5) 將細胞板置于 37℃、5% CO2培養箱中培養 6 h 左右,進行換液,換成含 10% 血清的普通培養基,在 37℃,5%CO2 孵育箱中繼續培養 24 h 左右。


    四、穩定轉染細胞株的篩選


    1.從 37℃,5%CO2孵育箱中取出培養皿,棄去含轉染試劑的培養基,用 PBS 沖洗細胞 2 遍,胰蛋白酶消化,接種 1/2 的細胞到 100 mm 培養皿中,加入含 500 ug/ml G418 的新鮮培養基,每 2-3 天更換一次新的篩選培養基,每天觀察細胞的死亡情況。


    2.當正常細胞完全死亡后,換用新的不含 G418 的培養基培養。每天觀察細胞生長狀態。


    3.在細胞達到 60% 匯合率時再用含 500 ug/ml G418 的培養基篩選一次。


    4.當細胞達到 90% 以上匯合率時將細胞轉移至培養瓶中繼續培養(轉染后 10~12 天左右)。以后每隔 4~5 天再用含 500 ug/ml G418 的培養基篩選。


    5.直到穩定表達轉染質粒的細胞達到一定數量后可以收集樣品(約轉染后 15 天左右)。以后繼續培養時加入的 G418 濃度降一半。


    收起 
    注意事項

    鋪板時要將細胞消化完全混勻,避免細胞堆積生長。

    其他

    1.LB 培養基的配制:在 950 ml 去離子水中加入:胰化蛋白胨 10 g,酵母提取物 5 g,NaCl10 g,搖動容器直至溶質溶解。用 5mol/LNaOH 調 pH 至 7.0,用去離子水定容至 1L,在 15psi 高壓下蒸汽滅菌 20 min。


    2.LB 固體培養基及倒板:


    (1)配制:100 mlLB 培養基加入 1.5 g 瓊脂粉


    (2)抗生素的加入:高壓滅菌后,將融化的 LB 固體培養基置與 55℃ 的水浴中,待培養基溫度降到 55℃ 時(手可觸摸)加入氨芐抗生素(終濃度為 50 μg/ml),以免溫度過高導致抗生素失效,并充分搖勻。


    (3)倒板:一般 10 ml 倒 1 個板子。培養基倒入培養皿后,打開蓋子,在紫外下照 10-15 分鐘。


    (4)保存:用封口膠封邊,并倒置放于 4℃ 保存,一個月內使用。


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