3.
取1 mg/ml 的蛋白酶K稀釋于150 ml PBS(終濃度6 μg/ml),將玻片浸于此液中,室溫溫育5 min
后,400×顯微鏡下觀察細胞,如多數待檢細胞呈現小“圓泡”、 “斑點”或“胡椒粒”狀,可馬上進行步驟4操作。溫育5 min
后,如未出現上述情形,亦可繼續溫育,時間可長至60 min,待細胞表面呈小氣泡狀時,及時進行步驟4。
4. 在95℃加熱載玻片2 min 以滅活蛋白酶K。然后浸于PBS中10 s、水中10 s,再晾干載玻片。
5. 加10 μl 無RNA酶的DNA酶液至載玻片各樣品上,放加濕盒中,于37℃溫育過夜。
6. 用沖洗緩沖液洗片1次,然后以DEPC處理的水冼2次,晾干。
7a. 如使用AMV或MoMuLV 反轉錄酶:配置如下反轉錄體系(總體積20 μl)
(1)2 μl 10×AMV/MoMuLV RT緩沖液(1×)
(2)2 μl 10 mmol/l 4種dNTP混合液(終濃度1 mmol/l)
(3)0.5 μl 40 U/μl RNasin(終濃度1 U/μl)
(4)1.0 μl 20 μmol/l 下游行物(終濃度1 μmol/l)
(5)0.5 μl 20 U/μl AMV或MoMuLV 反轉錄酶(終濃度0.5 U/μl)
(6)8 μl DEPC處理過的水
7b. 如使用SuperScript 2反轉錄酶:配置如下反轉錄體系(總體積20 μl)
(1)4 μl 5×反應緩沖液(隨酶提供:1×終濃度)
(2)2 μl 10 mmol/l 4dNTP混合液(終濃度 1 mmol/l)
(3)0.5 μl 4 U/μl RNasin(終濃度 0.1 U/μl)
(4)1.0 μl 20 mmol/l 下游引物(終濃度 1 μmol/l)
(5)0.5 μl 20 U/μl SuperScript 2(終濃度0.5 U/μl)
(6)1.2 μl 0.1 mol/l DTT(終濃度6 mmol/l)
(7)4.8 μl DEPC處理過的水
8. 加10 μl 反轉錄酶體系于載玻片各樣品上,并小心蓋上20 mm×60 mm 的蓋玻片,放一加濕盒中,于42℃或37℃溫育1 h。